RECUENTO DE HEMATÍES Práctica XIII del libro 21/11/14

RECUENTO DE HEMATÍES

INTRODUCCIÓN

El recuento de hematíes o RBC ( Red Blood Count) consite en la determinación del número de eritrocitos presentes en un volumen determinado de sangre (generalmente, en 1 mm3 o microlitro).


METÓDICA

Fundamento

 Para el recuento en cámara de glóbulos rojos, se diluye la sangre problema en un líquido apropiado y posteriormente se deposita en la cámara de recuento, donde se cuentan células presentes en algunos cuadrados de uno de los retículos.

Material necesario

• Una pipeta diluidora de Thoma, para recuento de glóbulos rojos.
• Un tubo de goma con boquilla, adaptable a la pipeta diluidora.
• Una cámara de recuento, con un retículo tipo Neubauer mejorado.
• Un cubre (hay unos cubres especiales para su uso en recuentos con cámara).
• Un microscopio.

Reactivos

• Líquido de dilución. Éste debe de ser isotónico con el plasma, para evitar la alteración morfológica e incluso la lisis de los hematíes.

El más utilizado es el de Hayem, que se compone de las siguientes sustancias:

-2,5 g de sulfato sódico.
-0,5 g de cloruro sódico.
-0,25 g de cloruro mercúrico.
-100 ml de agua destilada.

Si contiene precipitados, antes de usarlo deberá ser filtrado.

Muestra

• Sangre capilar obtenida por punción del pulpejo de un dedo, o sangre venosa procedente de una punciòn venosa y anticoagulada con EDTA.

Técnica

1. Situar un cubre sobre el retículo de la cámara. Para facilitar su adhesión a ésta, se ejerce una ligera presión al tiempo que se desliza el cubre sobre las bandas laterales, previamente humedecidas con H2O, de su porción central.
2. Aspirar la sangre hasta la señal de 0,5 ( si se cree que puede haber una policitemia) o hasta la de 1 ( si se piensa que puede existir una anemia).
3. Limpiar cuidadosamente el exterior de la pipeta con un algodón.
4. Aspirar líquido diluyente hasta la señal de de 101.
5. Quitar el tubo de goma y homogeneizar el contenido moviendo la pipeta con cuidado durante 2 o 3 minutos.
6. Desechar las tres primeras gotas y depositar la cuarta entre la cámara y el cubre.
7. Dejar reposar la sangre unos minutos para qie las células presentes puedan sedimentarse.
8. enfocar el retículo con el objetivo de 40 x y verificar que la distribución de los hematíes es homogénea.
9. Contar  los hematíes presentes en 80 cuadros pequeños del cuadro grande central, esto se logra contando los 4 cuadros medianos de las esquinas y en el del centro.,  solo se cuentan los hematíes contenidos dentro del cuadro y los que están en contacto con las líneas de demarcación superior o derechas y se sigue un orden en zig-zag.

Lectura de resultados

    Como se cuentan los hematíes en 5 cuadrados medianos del cuadrado grande central, y éste tiene 25 cuadrados medianos, hay que multiplicar por 5 la cifra obtenida en el recuento, para calcular el número de hematíes que hay en un cuadrado grande.

     Como la longitud de cada uno de los lados del cuadrado grande central es de 1 mm, y la longitud del espacio comprendido entre éste y el cubre es de 0,1 mm, hay que multiplicar x10 el resultado anterior, para determinar así el número de hematíes existentes, no en 0,1 mm3, sino en 1 mm3.

    Como la sangre, previamente al recuento propiamente dicho, se diluye, hay que multiplicar el resultado anterior x100, si se ha partido de la sangre entera contenida hasta el enrase de 1, o por 200, si se ha partido de la sangre entera contenida hasta el enrase de 0,5 (para calucular las diluciones realizadas no se tiene en cuenta el líquido contenido en el tubo capilar largo de la pipeta luidora, pues se considera que éste no se mezcla con el resto a nivel del bulbo).

    En definitiva, para su cálculo puede emplearse la siguiente fórmula:

                                                             RBC  = H x 5 x 10 x D.

RBC = recuento de hematíes (número de hematies por mm3 de sangre)

H = hematíes contados en 5 cuadrados medianos

D = factor de dilución (100 o 200)

El margen de error de esta técnica es alto ( un   + 20 %).

              RBC = 1050 X 5 X 10 X 100
              RBC = 5.250.000 / MM3

INTERPRETACIÓN CLÍNICA DE LOS RESULTADOS

La disminución del RBC se produce en las anemias y su aumento se da en la policitemias.

Se considera normal un RBC comprendido entre los 4 y los 5,5 millones/mm3 en las mujeres, y entre los 4,5 y los 6 millones/mm3 en los varones.

Hoja de trabajo

    1º. ¿ Qué se debe hacer si el líquido de Hayen contiene precipitados?
          Hay que filtrarlo.
    2º. ¿Cuál es el volumen de sangre diluida que hay sobre cada uno de los cuadrados pequeños donde se han contado los hematíes?
          0,5 x 0,5 x 0,1 = 0.0025 mm3.
    3º. ¿Cuál es el volumen de sangre diluida que hay sobre cada uno de los cuadrados medianos donde se han contado los hematíes?
          0,20 x 0,20 x 0,1 = 0,004 mm3.
    4º. ¿Cúal es el volumen de sangre diluida que hay sobre el cuadrado central?
          1 x 1 x 0,1 = 0,1 mm3.
    5º. Si la pipeta de Thoma se enrasa con sangre hasta la señal de 1, ¿cuál es la dilución posteriormente obtenida?
          Sería de 1/100.
    6º. Si la sangre se diluye a 1/200 y se cuentan 450 hematíes en 5 cuadrados medianos ¿cuál es el RBC obtenido?.
          RBC = 450 x 5 x 10 x 200
          RBC =  4.500.000 hematies/mm3.

Resultados obtenidos

Hematíes contados en 5 cuadrados medianos:  1.050.
Factor de dilución:   100.
RBC: 5.250.000 hematies/mm3

Valoración de los resultados

Sexo de la persona que pertenece la sangre:
Puede ser hombre o mujer, ya que esta dentro del rango de los 2.

El RBC obtenido es:
Normal.

EJERCICIOS DE AUTOEVALUACIÓN pag 67 del libro TEMA 5

EJERCICIOS AUTOEVALUACIÓN  (Recuentos celulares)

1. En una cámara de recuento, ¿Cuánto están sobreelevadas las dos bandas laterales con respecto a la central donde esta grabado el retículo?.      a).  0,1 mm.
2. ¿Como debe de ser el líquido de dilución utilizado para el recuento de hematíes?   b).  Isotónico.
3. En algunos recuentos electrónicos, a la menor dilución de la muestra de sangre se le añaden varias gotas de un reactivo que puede contener cianuro y un detergente no iónico. Este reactivo debe actuar durante unos minutos y produce:    a).  Una lisis de los hematíes.
4. ¿En que componente de un contador electrónico se cuentan, realmente, las células sanguíneas?    a).   Dispositivo de medida.
5. ¿Cuál no es un método electrónico de recuento celular?.   b).   Método de la reflexión de la luz ultravioleta.
6. ¿Qué enzima se cuantifica, en algunos autoanalizadores hematológicos, para clasificar a los leucocitos?.    d).    Peroxidasa.
7. Cuando una cámara de recuento, tipo Neubauer mejorada, está montada, ¿qué volumen de sangre diluida hay a nivel de 5 cuadrados medianos en el cuadrado central del retículo?.     d).   0,02 mm3.

VISUALIZACIÓN DE UNA CÁMARA DE RECUENTO práctica XII del libro

METÓDICA


Material necesario

• Un Microscopio.
• Una cámara de recuento con un retículo de Neubauer mejorado.

Procedimiento

1. Observar con el microscopio del retículo de la cámara de recuento:

• Primero, con el objetivo de pequeño aumento (4X).
• Luego con el objetivo de mediano aumento (10X).
• Después con el objetivo de gran aumento (40X).

    
    2.  Enfocar, con el objetivo de 10X, uno de los cuadrados grandes situados en las cuatro esquinas del retículo.

          Contar el número de cuadrados medianos contenidos en ese cuadrado grande periférico:

          Teniendo en cuenta que la longitud de cada uno de los lados del retículo es de 3mm, calcular:

• La longitud de los lados de cada cuadrado grande periférico:  1 mm.
• La longitud de los lados de cada uno de los cuadrados medianos englobados en un cuadrado grande periférico:   0,25 mm.

Teniendo en cuenta que la longitud del espacio comprendido entre el retículo y el cubre es de 0,1 mm, calcular el volumen de sangre diluida que hay en la cámara de recuento montada, a nivel de:

• El retículo entero:     3 x 3 x 0,1 = 0,9 mm3.
• Un cuadrado grande periférico:     1 x 1 x 0,1 = 0,1 mm3.
• Un cuadrado mediano incluido en un cuadrado grande periférico:    0,25 x 0,25 x 0,1 = 0.00625 mm3.

      3.  Enfocar, con el objetivo de 10 x, el cuadrado grande central.

Contar el número de cuadrados medianos contenidos en ese cuadrado grande central: 25 cuadros.

Contar el número de cuadros pequeños englobados en uno de esos cuadros medianos: 16 cuadros.

Teniendo en cuenta uqe la longitud de cada uno de los lados del retículo es de 3 mm, calcular:

• La longitud de los lados del cuadrado grande central:    1 x 1 mm
• La longitud de los lados de cada uno de los cuadrados medianos incluidos en el cuadrado grande central:    0,20 x 0,20 mm
• La longitud de los lados  de cada uno de los cuadrados peuqeños contenidos en uno de esos cuadrados medianos:    0,05 x 0,05 mm.

Teniendo en cuenta que la longitud del espacio comprendido entre el retículo y el cubre es de 0,1 mm, calcular el volumen de sangre diluida que hay en la cámara de recuento montada, a nivel de :

• El cuadrado grande central:   1 x 1 x 0,1 = 0,1 mm3.
• Un cuadrado mediano englobado en el cuadro grande central:   0,20 x 0,20 x 0,1 = 0,004 mm3.
• Un cuadrado pequeño incluido en uno de esos cuadrados medianos:   0.05 x 0,05 x 0,1 = 0,00025 mm3.

FÓRMULA LEUCOCITARIA Práctica XXVIII del Libro 01-12-2014

FÓRMULA LEUCOCITARIA 

METÓDICA

Fundamento

La fórmula leucocitaria o recuento diferencial leucocitario (RDL) consite en la determinación del porcentaje que representa cada uno de los tipos de leucocitos con respecto al total de ellos.

Material necesario

• Microscopio.
• Papel y lápiz o un registrador automático de células. Este último consiste en un aparato que tiene unas teclas. Cada tecla representa a un tipo de leucocito y hace una anotación cada vez que es presionada. Cuando el número de anotaciones llega a 100, suena una alarma.

Reactivos

• Aceite de inmersión

Muestra

• Una extensión de sangre con un colorante de uso habitual. (Panóptico rápido).

Técnica

1. Preparar el microscopio para que tenga el condensador alto y el diafragma abierto.
2. Enfocar la preparación con el objetivo de 10 x.
3. Comprobar que la preparación es buena y elegir una zona en la que los hematíes no estén superpuestos y los leucocitos se encuentran uniformemente distribuidos.
4. Enfocar esa zona de la preparación con el objetivo de inmersión.
5. Observar esa zona de la preparación mientras se describe un recorrido en forma de almenas o de greca.

Simultáneamente a esto, se clasifican y se cuentan los leucocitos que se van encontrando a lo largo de ese recorrido.

Lectura de resultados

.- Neutrófilos segmentados                   59

.- Neutrófilos en Cayado                         3

.- Eosinófilos                                           6

.- Basófilos                                              2

.- Monocitos                                            8

.- Linfocitos                                           22

                                                             ¬¬¬

                                                             100   total de leucocitos contados

Hoja de trabajo

1º.  ¿Con qué objetivo se observan los leucocitos cuando se determina una fórmula leucocitaria?

La fórmula leucocitaria o recuento diferencial leucocitario (RDL) consite en la determinación del porcentaje que representa cada uno de los tipos de leucocitos con respecto al total de ellos.

2º. ¿Cómo es el recorrido que se describe en la observación leucocitaria?

Un recorrido en forma de almenas o de greca.

3º. Cuándo se han de observar al menos 200 leucocitos?

Cuando se encuentra un mayor número de linfocitos que de neutrófilos (en el adulto) o más de un 10% de eosinofilos, más de un 12% de monocitos.

4º. Si de 100 leucocitos observados, 20 son linfocitos y el WBC es igual a 7000 leucocitos/mm3 de sangre, ¿Cuál es el número de linfocitos que hay en 1 mm3 de sangre?

nº TL= WBC x  % TL/ 100      

nº TL= 7000  x  20 / 100 = 1400 linfocitos en 1 mm3. 

5º. ¿Cómo se llama el aumento de los monocitos?

Monocitosis.

DETECCIÓN DE CUERPOS DE HEINZ Práctica XXI del libro

DETECCIÓN DE CUERPOS DE HEINZ

METÓDICA

Fundamento

Los precipitados intraerotricitarios de Hb desnaturalizada se tiñen con el cristal violeta y adquieren el aspecto de pequeñas granulaciones que reciben el nombre de cuerpos de Heinz.

Material necesario:

• Un tubo de ensayo.
• 2 pipetas graduadas (por ejemplo de 1 cc).
• Una pipeta Pasteur.
• Un baño de agua.
• 2 portaobjetos.
• Un microscopio.

Reactivos

• Colorante consistente en una solución de cristal violeta que puede prepararse de la siguiente forma:

1. Mezclar 20 g de cristal violeta con 80 cc de suero fisiológico y 20 cc de agua destilada.
2. Agitar la mezcla durante 5 minutos, para asegurar la disolución de sus componentes.
3. Filtrar la disolución.
4. Añadir al líquido filtrado 82 cc de suero fisiológico y 18 cc de agua destilada.
5. Conservar la solución colorante a temperatura ambiente, durante un tiempo indefinido.

• Líquido de inmersión.

Muestra

• Sangre total.

Técnica

1. Mezclar en un tubo de ensayo, volúmenes iguales de la solución de cristal violeta y de la sangre problema ( por ejemplo 1 ml de colorante y 1 ml de muestra).
2. Incubar la mezcla, a 37 ºC, durante 5 minutos.
3. Hacer una extensión fina de la mezcla.
4. Dejar secar la extensión.
5. Observar la extensión con el microscopio, utilizando para ello el objetivo de inmersión.

Lectura de resultados 

Los cuerpos de Heinz, una vez teñidos, se observan como pequeñas granulaciones de color púrpura que se localizan en la periferia de los hematíes.

HOJA DE TRABAJO

1º.  ¿Cuál es el colorante usado para teñir los cuerpos de Heinz?.

Colorante cristal violeta.

2º.  ¿De qué color son los cuerpos de Heinz teñidos?.

De colorr púrpura.

3º.  ¿Dónde se localizan los cuerpos de Heinz?.

En el interior de los eritrocitos, también pueden aparecer cuerpos de Heinz intraeritocitarios en el déficit congénito de glucosa-6-fosfato deshidrogenasa.

CONTAJE DE RETICULOCITOS Práctica XVI del libro Fecha 27-11-2014

CONTAJE DE RETICULOCITOS

INTRODUCCIÓN

Los reticulocitos son eritrocitos inmaduros que contienen, como su nombre indica, un retículo o red cromatínica formada por restos de ARN (ribosomas), Mitocondrias y otros órganos celulares.

Tienen un tamaño de 8 o 9 micrómetros de diámetro. Permanecen en médula ósea unos 2 0 4 días y después salen a sangre periférica, donde terminan el proceso de maduración en unas 24 horas.

Su cantidad en sangre periférica es un reflejo de la actividad eritropoyética medular.

METÓDICA

Fundamento

Podemos observar los reticulocitos al microscopio ótico mediante la tinción con colorantes vitales, azul de metileno nuevo o azul de cresil brillante. Estos colorantes dan lugar a la precipitación de los restos de ARN, y se observan como filamentos de color azul intenso en el interior de la célula.

Según el grado de maduración que posea el reticulocito presentara un modelo de retículo distinto, de ovillo denso en el caso de los más inmaduros o de gránulos escasos para los más maduros. Se pueden clasificar en cuatro grupos distintos:

               Grado I                    Grado II           Grado III             Grado IV
                joven                                                                          Célula vieja

Material necesario:

• Microscopio óptico
• Tubos de hemólisis
• Pipetas Pasteur.
• Portas.
• Baño de agua
• Sistema de filtración.

Reactivos:

• Azul de cresil brillante en polvo.
• Solución salina al 0,9%.
• Citrato sódico al 3%.
• Agua destilada.
• Aceite de inmersión.

Muestra

Sangre anticoagulada con EDTA.

Debido a que los reticulocitos también maduran in vitro, es aconsejable que la sangre utilizada se haya extraido recientemente, como máximo 6 horas antes de su análisis.

Técnica.

1. Preparación del colorante:

    Mezclamos  80 ml de solución salina y 20 ml de citrato sódico al 3%.

    Pesamos 1 gramo de azul de cresil brillante y lo disolvemos en la mezcla anterior.

    Filtramos antes de usarlo.

2. Tinción de los reticulocitos:

Es una tinción supravital, es decir, se hace mientras las células aún están vivas.

Para ello echamos 3 gotas de la solución colorante en un tubo de hemólisis y otras 3 gotas de sangre total previamente homogeneizada.

Mezclamos suavemente y tapamos con papel parafilm. Introducimos en el baño de agua a 37 ºC durante 5 minutos

Pasado este tiempo volvemos a homogeneizar y tomamos una gota de la suspensión para depositarla en un porta.

Realizamos una extensión y dejamos secar al aire .

Lectura de resultados

Con una gota de aceite de inmersión observamos la extensión con el objetivo de 100 x.

 

Los resultados obtenidos no eran buenos ya que el microscopio no esta bien, por lo que no podemos distinguir nada.

Interpretación de los resultados.

Los hematíes debían haberse teñido de un verde amarillento y se distinguirían de los hematíes, por que en su interior se verían como unos hilos finos de color azul.

HOJA DE TRABAJO

1º.  ¿Qué son los reticulocitos?
Los reticulocitos son eritrocitos inmaduros que contienen, como su nombre indica, un retículo o red cromatínica formada por restos de ARN (ribosomas), Mitocondrias y otros órganos celulares.

2º.  ¿Qué tipo de tinción estamos utilizando?.
Un colorante vital, azul de cresil brillante.

3º.  ¿Por qué hacemos la correción del porcentaje de reticulocitos?.
El indice corregido se hace para determinar si es una anemia o una leucemia.

4º.  ¿Qué nos expresa el IPR?.
Los días que tarda en madurar el reticulocito en sangre periférica.
Un IPR mayor de 3 nos indica una actividad eritropoyética medular, mientras que un IPR menor de 2 indica una escasa actividad eritropoyética.

DETERMINACIÓN DEL VALOR DEL HEMATOCRITO MEDIANTE EL MICROMÉTODO

DETERMINACIÓN DEL VALOR DEL HEMATOCRITO MEDIANTE EL MICROMÉTODO

INTRODUCCIÓN

Cuando se centrifuga la sangre, la fracción forme, que contiene los hematíes, se agrupan en el fondo del tubo y el plasma queda de forma de sobrenadante.

El vakir hematocrito, o simplemente hematocrito (HTO o HTC o HCT) es la relación existente entre el volumen ocupado por los hematíes y el ocupado por la sangre total, exp`resada en forma de porcentaje.

Este valor no es exactamente igual en todas las zonas vasculares del organismo. Así pues, el HCT obtenido con sangre capilar es algo superior al logrado a partir de sangre venosa.

METODICA

Fundamento

El HCT puede determinarse por métodos manuales o por métodos automáticos.

Los métodos manuales consisten en la centrifugación de la sangre, aplicándola una fuerza de 2000 a 5000 g (macrométodo) o de 12000 a 15000 g (micrométodo).

Los método automáticos pueden basarse en 2 principios:

• El cálculo matemático del HCT a partir de los valores RBC y de volumen copurcular medio, obtenidos electrónicamente con anterioridad.
• El análisis de la sombra que produce la población eritrocitaria, al reflejarse en un campo oscuro.

Con los métodos manuales también se cuentan, junto con el volumen de los hematíes, el de los leucocitos, el de las plaquetas y el del plasma que queda atrapado entre los hematíes. Por ello, el valor de HCT conseguido con métodos automáticos es más exacto y suele ser 1 o 2 unidades más bajo que el logrado por métodos manuales.

Material necesario:

• Tubos capilares de vidrio 7 a 7,5 cm de longitud y 1 mm de diámetro interno. No están graduados y son desechables.

Si la muestra es sangre capilar, éstos han de estar heparinizados interiormente; mientras que si la muestra es sangre venosa y ha sido adecuadamente anticoagulada, pueden no estar heparinizados. Los heparinizados tienen una franja roja en uno de sus extremos.

• Plastilina.
• Algodón o gasas.
• Una centrífuga de microhematocrito. Ëstta consta de una especie de plato horizontal con unos surcos para colocar los capilares, y permite apligar una fuerza centrífuga de 12000 a 15000g durante un tiempo controlado automáticamente.
• Una regla milimetrada o un lector de microhematocrito.

Reactivos

• EDTA  tripotásico dispuesto en tubos.

Muestra

• Sangre capilar o venosa. Esta última debe ser recogida en tubos con EDTA tripotásico.

Si se utiliza sangre capilar, se ha de desechar la primera gota obtenida tras la punción. Si se emplea sangre venosa, se deberá homogeneizar perfectamente antes de su uso.

Técnica

1. La determinación ha de hacerse por duplicado.
2. Llenar cada tubo capilar con sangre, hasta las 3/4 partes de su longitud. El llenado se efectúa por capilaridad y se realiza poniendo en contacto uno de los extremos del tubo capilar con la gota de sangre de sangre, o introducciéndolo en el tubo de sangre e inclinando éste, posteriormente, para facilitar el proceso.
3. Limpiar el exterior de cada tuvo con un trozo de algodón o con una gasa.
4. Sellar el extremo de cada tubo por el que ha entrado la sangre con plastilina. Para ello, se hace penetrar el tubo en la plastilina, o incluso se atraviesa ésta con aquél.
5. Colocar, debidamente equilibrados, los tubos en la centrífuga. En ella los tubos se sitúan con su extremo tapado hacia fuera, ajustados al borde exterior y adecuadamente encajados en sus surcos.
6. Centrifugar los tubos a unas 12000 g durante 5 minutos.

Lectura de resultados

Puede realizarse de 2 maneras:

• Midiendo las columnas formadas en el interior de cada tubo con una simple regla milimetrada y calculando, segidamente, el porcentaje que le corresponde a la columna de eritrocitos, mediante una sencilla regla de tres.

• Mediante un lector de microhematocrito.

Entre los valores obtenidos con los dos tubos no debe haber una diferencia superior al 2% del mayor de ellos . Si esta diferencia es superior al 2% se repite la determinación, y si es inferior, se da como valor final del HCT a la media de ambos valores.

Si el valor final de HCT es superior a 50, se repite la determinación, pero alargando la centrifugación a 10 minutos.

INTERPRETACIÓN CLINICA DE LOS RESULTADOS OBTENIDOS.

El valor normal del HCT  está comprendido entre el 42 y el 47% en las mujeres, y entre el 45 y el 52% en los varones.

Un valor bajo del HCT suele ser signo del padecimiento de una anemia. Sin embargo, hay falsos descensos del HCT ocasionados por hemodilución ( por ejemplo, el de la hidremía del embarazo).

Paradojicamente, el HCT suele ser normal en la fase más temprana de las hemorragias agudas, pues en éstas se pierden células y plasma en la misma proporción.

Un valor alto del HCT suele ser signo del padecimiento de una poliglobulina. Sin embargo, también hay engañosos ascensos del HCT producidos por hemoconcentración (por ejemplo, el de la deshidratación).

HOJA DE TRABAJO

     1.  ¿Qué significa la franja roja que tienen algunos capilares de microhematocrito?
 Que llevan EDTA tripotásico.

     2.  ¿A qué fuerza relativa de centrifugación (g) se centrifuga la sangre?

A 12000 g durante 5 minutos.

     3.  Si la medida de la columna de eritrocitos es de 20 mm y la de la columna total es de 50 mm, ¿Cuál es el valor del hematocrito?.

El HCT seria del 40%.

     4.   Si con un capilar se obtiene un HCT de 45 y con el otro uno de 43, ¿Cómo debe de ser la forma de actuar ante estos resultados?.

Hay justo 2% se podria dar por bueno, o para afianzarse repetir la prueba.

Resultados obtenidos:

                                  E             T             HCT-RM             HCT-L

   

Primer tubo               19            46             41,30                   41,30

Segundo tubo            19            45             42,22                   42,22

T   = 46 mm
E   = 19 mm
T 2= 45 mm

Si T¬¬¬100%
    E¬¬¬HCT

            E x 100       19 x 100                                       19 x 100
HCT=¬¬¬¬¬¬¬ = ¬¬¬¬¬¬¬ =  41,30 %    HCT 2 = ¬¬¬¬¬¬¬ = 42,22%
                 T                46                                                 45
Medidas con un lector de microhematocrito

T= 46
E= 19
T 2=45
Si T¬¬¬100%
    E¬¬¬HCT

            E x 100       19 x 100                                       19 x 100
HCT=¬¬¬¬¬¬¬ = ¬¬¬¬¬¬¬ =  41,30 %    HCT 2 = ¬¬¬¬¬¬¬ = 42,22%
                 T                46                                                 45

Valor final en las dos mediciones:

                    HCT + HCT 2       41,30 + 42,22

HCT final = ¬¬¬¬¬¬¬¬¬¬¬ = ¬¬¬¬¬¬¬¬¬¬¬ = 41,76%

                             2                            2

• 2% del valor mayor de HCT: no es menor.
• Diferencia entre ambos valores de HCT:  0.92%.
• ¿Son válidos los resultados obtenidos? Estarían por debajo del porcentaje para hombres que esta comprendido entre 45 y 52%.
• En el caso positivo, ¿Cuál es el valor final de la determinación? Sería como valor final, la media de las dos medidas obtenidas con los dos capilares, que en este caso sería del 41,76%.

Valoración de los resultados.

• ¿ha de prolongarse la centrifugación hasta 10 minutos?  No, ha sido suficiente.
• El valor final de la determinación indica que el HCT es: Bajo.